Zestaw RUO HBcAb Elisa

Celem badania RUO HBcAb ELISA jest jakościowe wykrywanie przeciwciał do wirusa zapalenia wątroby typu B w antygenie rdzeniowym w surowicy/plazmie ludzkiej.

HBV należy do rodziny Hepadnaviridae i jest otoczonym wirusem dwustronnego DNA, który jest główną przyczyną przenoszenia wirusa zapalenia wątroby przez krew.Wpływ zakażenia wirusem HBV waha się od łagodnego do ciężkiegoW celu klasyfikacji zakażenia wirusowego zapalenia wątroby typu B,wskaźniki serologiczne muszą być zidentyfikowane w trakcie trzech faz zakażenia - inkubacjiGłównym składnikiem wirusa jest antygen rdzeniowy wirusa zapalenia wątroby typu B (HBcAg).Ten antygen rdzenia składa się z pojedynczego polipeptydu o masie około 17 kD, który jest uwalniany po rozbiciu cząstek rdzenia.. W antygenie występuje co najmniej jeden czynnik immunologiczny. Wkrótce po wystąpieniu HBsAg pojawiają się przeciwciała przeciwko HBcAg (całkowite przeciwciało przeciw HBc i IgM) i nigdy nie ustępują. W pojedynczych przypadkach,zakażenie wirusem zapalenia wątroby typu B może wystąpić bez immunologicznie wykrywalnego przeciwbrzusznika HBc.Badania przesiewowe na obecność anty-HBc dostarczają danych dotyczących częstości występowania wirusa zapalenia wątroby typu B w różnych populacjachJest to spowodowane tym, że anty-HBc jest markerem ostrego, przewlekłego lub ustalonego zakażenia wirusem HBV.Wraz z innymi badaniami na zapalenie wątroby typu B, marker anty- HBc umożliwia prawidłową diagnozę i prawidłowe monitorowanie postępu wirusa.Anty-HBc może być jedynym wskaźnikiem zakażenia wirusem zapalenia wątroby typu B (w tym inne badania u pacjentów o negatywnym HBsAg).

Materiały i składniki

MICROPLATE:Płytka jest zamknięta w aluminiowej torebce z suszarką. Każda z studni zawiera oczyszczony HBcAg.Niewykorzystane studnie lub taśmy umieszcza się w dostarczonym plastikowym, uszczelniającym worku do przechowywania razem z suszarką i zwraca się do temperatury 2-8°CPo otwarciu stabilny przez miesiąc w temperaturze 2- 8°C.

NEGATYWNA KONTROL:(1x1, 0 ml na fiolkę) konserwacji.00, 1% ProClinTM 300 Żółtawy płyn wypełniony fiolką z zieloną klapą śrubową. Bufor stabilizowany białkiem nie reaguje na HBcAb. Gotowy do użycia zgodnie z zaopatrzeniem. Po otwarciu stabilny przez jeden miesiąc w temperaturze 2- 8°C.

Pozytywna kontrola:(1x1, 0 ml na fiolkę) konserwacji.00, 1% ProClinTM 300 Czerwony płyn wypełniony fiolką z czerwoną klapą śrubową. HBcAb rozcieńczony w stabilizowanym białkiem buforze. Gotowy do stosowania zgodnie z zaopatrzeniem. Po otwarciu stabilny przez jeden miesiąc w temperaturze 2- 8°C.

Związek:(1x6 ml na fiolkę) konserwacji.00, 1% ProClinTM 300 Czerwony płyn w białej fiolce z czerwonym nakrętkiem.stabilny przez jeden miesiąc w temperaturze 2-8°C.

WASCH BUFFER:(1x20 ml na butelkę) RozcieńczANIE PRZED UŻYTKOWANIEM! detergent Tween-20 Bezbarwny płyn wypełniony w białej butelce z białą muszką.PH 7.4, 20 × PBS Koncentrat należy rozcieńczyćOd 1 do 19Po rozcieńczeniu stabilny przez tydzień w temperaturze pokojowej lub przez dwa tygodnie w temperaturze 2-8°C.

Substrat A:(1x6 ml na fiolkę) Bezbarwny płyn wypełniony w białej fiolce z zieloną śrubokrętką.

Substrat B:(1x6 ml na fiolkę) Bezbarwny płyn wypełniony w czarnej fiolce z czarną muszką.

Zatrzymać rozwiązanie:(1x6 ml na fiolkę) Bezbarwny płyn w białej fiolce z białym nakrętkiem.₂Tak.₄Po otwarciu stabilny przez jeden miesiąc w temperaturze 2- 8°C.

Plastykowy worek z zamknięciem:Do zamykania nieużywanych taśm 1 jednostka

WŁĄCZNIK opakowania1 kopie

OPAKA z kartonu2 arkusze

Aby zakryć płyty podczas inkubacji i zapobiec parowaniu lub zanieczyszczeniu studni.

Procedura

Przygotowanie czynników:Pozwól, aby odczynniki osiągnęły temperaturę pokojową (18-30°C).W celu rozcieńczenia bufora należy użyć wody destylowanej lub dezjonizowanej i wyłącznie czystych naczyń.Wszystkie pozostałe odczynniki są:Gotowe do użycia.

1. Przygotowanie:W przypadku nieużywanych taśm mikropłotów należy umieścić je z powrotem w aluminiowej opakowaniu i przechowywać w temperaturze 2-8°C.
2. Dodawanie próbki:Dodać 50 μl kontroli lub próbek do wyznaczonej studni.
3. Dodawanie konjugacji:Dodać 50 μlZwiązekdo każdej studni z wyjątkiem Blank.
4. Inkubacja:Pokryć płytkę pokrywką płytki i inkubacja na 30 minutyw temperaturze 37°C.
5. Pranie:Po zakończeniu inkubacji usuwa się i wyrzuca pokrywę płytki. Każde z nich myje się 5 razy rozcieńczonym buforem do mycia.Po ostatnim cyklu prania, obróć płytkę na papier do oczyszczania lub czyste ręczniko i uderz w nią, aby usunąć pozostałości.
6. Dodawanie podłoża:Do każdej studni dodaje się 50 μl roztworu podłoża A i 50 μl roztworu podłoża B.10 minut.w temperaturze 37°C, unikając światła.
7. Dodawanie rozwiązania Stop:Dodać z użyciem wielokanalizowanej pipety lub ręcznie50μJa...Stop Solution do każdej studni i delikatnie wymieszać.
8. Pomiar wchłaniania:Kalibruj czytnik płytek z studnią Blank i odczytaj absorbancję w450 nmJeżeli używany jest instrument z podwójnym filtrem, ustawić długość fali odniesienia na630 nm. obliczyć wartość odcięcia i ocenić wyniki. (Uwaga:odczytywanie absorbancji w obrębie10 minut.po zaprzestaniu reakcji).